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Flash和Prep液相色谱
上样量选择的理论基础
Pure应用
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简介
在制备液相色谱中，样品的上样量是影响分离效果的重要因素之一。要纯化分离的样品应以合适的浓度添加到色谱柱柱床上，以实现窄的水平谱带。如果上样量太大，则谱带变宽，分离效率降低。
Flash和Prep HPLC的上样量有很大不同。由于Flash色谱通常用于预纯化，高分辨率不是优先考虑的因素，因此上样量往往比Prep HPLC高。在Prep HPLC中，主要目的是获得最高纯度的物质，故基线必须得到分离。
正相和反相二氧化硅（如C-18、氨基或二醇基）的上样量也存在相当大的差异。由于非键合相二氧化硅的表面积大，故这种固定相的载样能力更高。正相二氧化硅的载样能力通常比键合二氧化硅的载样量高约10倍。
标准二氧化硅（粒径40-60 μm）通常可接受10%的载样量；在使用较小颗粒（15-30μm）时可以达到30%。然而，重要的一点我们要知道，无论是反相还是正相，上样量由样品的复杂程度决定的。对于含有多种化合物的复杂样品，决定其复杂性的因素是纯化目标化合物与其邻近的洗脱组分的分离程度。通常情况下，复杂样品需要少量多次的上样方式来处理。
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制备液相色谱上样量选择的理论基础
在液相色谱中，样品可以通过两种不同的方式上样：固体或液体。液体上样，是将样品溶解在溶剂中后，直接注入色谱柱上。固体上样，是将粗样品与载体材料（如硅胶）的固体均匀混合物放在色谱柱前面。
▲ 图1：液体和固体样品
每种技术都有其需要考虑的特殊方面，下面将进行更详细的讨论。
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液体上样
液体上样是一种将样品很好地溶解在洗脱初始溶剂中的方法，可用于 Flash 和 Prep 液相色谱应用中。推荐使用弱极性溶剂，因为强极性溶剂会降低分离度。
液体上样被认为是最简单、最快捷的方法，但可能会造成样品损失，需要考虑的因素如下：
化合物在初始溶剂中的溶解度:样品需要完全溶解，因为进样系统或色谱柱顶部的沉淀可能在系统中产生过大的压力，并最终导致样品流失。
溶解溶剂的极性：如果使用极性溶剂溶解样品，则它们可能会吸附在极性硅胶柱基质上，并对更多极性化合物（后来在硅胶材料上洗脱的化合物）的分离产生不利影响。
样品溶剂的体积:体积越大，样品从一开始就迁移到填料柱床中的风险就越高，从而导致谱带变宽、分离度降低。理想的样品体积不应超过色谱柱体积的10%。样品的保留率越高，可装载的体积就越大。
样品量：每根色谱柱都有规定的装载量。理想的样品量不应超过纯化柱的最大装载量。
在 Flash 液相色谱中，通常是在注射器的帮助下将液体样品手动直接注入到色谱柱顶部（如下图）。由于高背压，无法在 Prep 液相色谱柱上进行手动上样。
因此，它是通过专用的进样阀完成的，如图所示：
▲ 图2：Flash和Prep HPLC中的液体上样
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固体上样
固体上样是仅适用于 Flash 色谱分离应用的技术，用于只能在强溶剂中溶解的样品，或用于具有难以溶解的粘性或多杂质样品。该方法可以通过减少谱带展宽和随后的拖尾效应来改善分辨率。一般来讲，固体上样分离较慢，但与液体上样相比，分辨率更高。推荐的样品量不应超过色谱柱的最大载样量。
固体上样通常通过以下步骤完成：
将粗样品溶解在合适的极性溶剂中。
然后，将该混合物在超声浴中超声几分钟，以提高溶解度。
过滤混合物以除去尚未完全溶解的物质。
将硅胶以粗样品重量的5倍添加到上述混合物中。
溶剂通过旋转蒸发仪完全地减压蒸馏干。
最后，将粗样品和硅胶的混合物装入固体装样器中，然后将其安装在色谱柱的前面。连接溶剂洗脱流路。
待分离的组分不断地从固体装样器中洗脱到实际分离色谱柱中。
▲ 图3：在Flash色谱分离中的固体上样
支撑材料在固体上样技术中起到至关重要的作用：吸收粗样品，使洗脱的化合物能更好地转移和分配。它还可以将样品固定在适当的位置。这对于具有挑战性的样品（如油性提取物）非常有利。
非键合的二氧化硅是最常用的吸附剂，但可能不是最佳的选择。通常，建议使用与色谱柱相同类型的硅胶作为支撑材料。这样可以避免不必要的化学相互作用或样品的不可逆吸附。一种有用的替代材料是 Celithe,由于其中性的化学特性，它不与任何物质发生相互作用。
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结论
综上所述，液体上样和固体上样各有优劣、各有所长，可根据样品性质和试验目的来选择使用，差异化的操作来得到目标纯化合物。
表1：固体上样和液体上样的差异
技术 | 优势 | 劣势 |
液体上样 | 快速、简单 | 分辨率较差 |
固体上样 | 高分辨率 | 耗时 |
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